Вивчення впливу аспірату кісткового мозку на денервований м’яз за даними КТ та МРТ-досліджень
ARTICLE PDF

Ключові слова

денервований м’яз
аспірат кісткового мозку
КТ
МРТ
реіннервація

Як цитувати

Страфун, С., Лисак, А., & Третьяков, Р. (2021). Вивчення впливу аспірату кісткового мозку на денервований м’яз за даними КТ та МРТ-досліджень. TERRA ORTHOPAEDICA, (4(111), 28-35. https://doi.org/10.37647/0132-2486-2021-111-4-28-35

Анотація

Резюме. Актуальність. Ушкодження периферійних нервів призводить до вираженого порушення функції кінцівки через процеси денервації, гіпотрофії та дегенерації скелетних м’язів. Неінвазійними методами візуалізації цих змін є УЗД, КТ та МРТ.

Мета. В експерименті вивчити вплив аспірату кісткового мозку на перебіг денерваційно-реіннерваційних процесів у скелетних м’язах із використанням КТ та МРТ-методів дослідження.

Матеріали і методи. Експеримент проведено на 36 кролях, поділених на 4 групи: група псевдооперованих тварин, 1-ша група (нейротомія та нейрорафія сідничного нерва), 2-га група (одномоментне введення аспірату кісткового мозку), 3-тя група (відстрочене введення аспірату кісткового мозку). КТ виконували на апараті Philips Brilliance 16, МРТ – на апараті Philips Achieva 1.5 Тесла.

Результати. Показники псевдооперованих тварин не відрізнялись від норми. Виявлено достовірну (p<0,05) різницю рентгенологічної щільності між цільовими м’язами оперованої та неоперованої кінцівки. Відзначалась загальна більша площа поперечного перерізу цільових м’язів у 2-й групі (медіана – 1,15 см2), дещо менша – у 1-й групі (1,1 см2), та найменша – у 3-й групі (1,0 см2). Також відрізнялась загальна рентгенологічна щільність цільових м’язів, найбільшою вона була в 1-й групі (медіана – 69,21 HU), нижчою – у 2-й групі (67,66 HU), найнижчою – у 3-й групі (66,82 HU). Ми виявили достовірну (p<0,05) різницю між вираженістю МР-сигналу цільових м’язів у режимі Т1 між 1-ю і 2-ю групами.

Висновки. Введення аспірату кісткового мозку у цільові м’язи сприяє зменшенню набряку м’язів. Інтенсивність вираженості МР-сигналу в режимі Т1 в групі, де не виконували введення аспірату кісткового мозку, достовірно (р<0,05) більша, ніж у групах із введенням аспірату. Час введення аспірату кісткового мозку в цільові м’язи суттєво не впливав на параметри КТ та МРТ-сигналу.

https://doi.org/10.37647/0132-2486-2021-111-4-28-35
ARTICLE PDF

Посилання

Taylor CA, Braza D, Rice BJ, Dillingham T. The Incidence of Peripheral Nerve Injury in Extremity Trauma. American Journal of Physical Medicine & Rehabilitation. 2008; 87(5): 381-385. DOI: 10.1097/PHM.0b013e31815e6370.

Padovano WM, Dengler J, Patterson MM, Yee A, Snyder-Warwick AK, Wood MD, et al. Incidence of Nerve Injury After Extremity Trauma in the United States. HAND. 2020: 1-9. DOI: 10.1177/1558944720963895.

Noland SS, Bishop AT, Spinner RJ, Shin AY. Adult Traumatic Brachial Plexus Injuries. J Am Acad Orthop Surg. 2019; 27(19): 705-716. DOI: 10.5435/JAAOS-D-18-00433.

Birch R. Surgical disorders of the peripheral nerves London: Springer; 2011.

Sugiura Y, Lin W. Neuron-glia interactions: the roles of Schwann cells in neuromuscular synapse formation and function. Biosci Rep. 2011 October; 31(5): 295–302. DOI: 10.1042/BSR20100107.

Jonsson S, Wiberg R, McGrath AM, Novikov LN, Wiberg M, Novikova LN, et al. Effect of Delayed Peripheral Nerve Repair on Nerve Regeneration, Schwann Cell Function and Target Muscle Recovery. PLOS ONE. 2013 February; 8(2): 1-13. DOI: 10.1371/journal.pone.0056484.

Sharma A, Sane H, Gokulchandran N, Badhe P, Pai S, Kulkarni P, et al. Cellular Therapy for Chronic Traumatic Brachial Plexus Injury. Adv Biomed Res. 2018; 27(7): 51. DOI: 10.4103/2277-9175.228631.

Hogendoorn S, Duijnisveld BJ, van Duinen SG, Stoel BC, van Dijk JG, Fibbe WE, et al. Local injection of autologous bone marrow cells to regenerate muscle in patients with traumatic brachial plexus injury. Bone Joint Res. 2014; 3(2): 38-47. DOI: 10.1302/2046-3758.32.2000229.

Zhu Y, Jin Z, Luo Y, Wang Y, Peng N, Peng J, et al. Evaluation of the Crushed Sciatic Nerve and Denervated Muscle with Multimodality Ultrasound Techniques: An Animal Study. Ultrasound Med Biol. 2020; 46(2): 377-392. DOI: 10.1016/j.ultrasmedbio.2019.10.004.

Volk GF, Pohlmann M, Sauer M, Finkensieper M, Guntinas-Lichius O. Quantitative ultrasonography of facial muscles in patients with chronic facial palsy. Muscle Nerve. 2014; 50(3): 358-365. DOI: 10.1002/mus.24154.

Stoll G, Wilder-Smith E, Bendszus M. Imaging of the peripheral nervous system. Handb Clin Neurol. 2013; 115: 137-153. DOI: 10.1016/B978-0-444-52902-2.00008-4.

Connor SEJ, Chaudhary N, Fareedi S, Woo EK. Imaging of muscular denervation secondary to motor cranial nerve dysfunction. Clin Radiol. 2006; 61(8): 659-669. DOI: 10.1016/j.crad.2006.04.003.

Holl N, Echaniz-Laguna A, Bierry G, Mohr M, Loeffler JP, Moser T, et al. Diffusion-weighted MRI of denervated muscle: a clinical and experimental study. Skeletal Radiol. 2008; 37(12): 1111-1117. DOI: 10.1007/s00256-008-0552-2.

Goodpaster BH, Kelley DE, Thaete FL, He J, Ross R. Skeletal muscle attenuation determined by computed tomography is associated with skeletal muscle lipid content. Journal of Applied Physiology. 2000; 89(1): 104-110. DOI: 10.1152/jappl.2000.89.1.104.

van de Sande MAJ, Stoel BC, Obermann WR, Tjong a Lieng JGS, Rozing PM. Quantitative Assessment of Fatty Degeneration in Rotator Cuff Muscles Determined With Computed Tomography. Investigative Radiology. 2005; 40(5): 313-319. DOI: 10.1097/01.rli.0000160014.16577.86.

Kamath S, Venkatanarasimha N, Walsh MA, Hughes PM. MRI appearance of muscle denervation. Skeletal Radiology. 2008; 37(5): 397-404. DOI: 10.1007/s00256-007-0409-0.

Bendszus M, Koltzenburg M, Wessig C, Solymosi L. Sequential MR imaging of denervated muscle: experimental study. AJNR Am J Neuroradiol. 2002; 23(8): 1427-1431. PMCID: PMC7976256.

Tepeli B, Karataş M, Coşkun M, Yemişçi OÜ. A Comparison of Magnetic Resonance Imaging and Electroneuromyography for Denervated Muscle Diagnosis. J Clin Neurophysiol. 2017; 34(3): 248-253. DOI: 10.1097/WNP.0000000000000364.

Kikuchi Y, Nakamura T, Takayama S, Horiuchi Y, Toyama Y. MR imaging in the diagnosis of denervated and reinnervated skeletal muscles: experimental study in rats. Radiology. 2003; 229(3): 861-867. DOI: 10.1148/radiol.2293020904.

West GA, Haynor DR, Goodkin R, Tsuruda JS, Bronstein AD, Kraft G, et al. Magnetic resonance imaging signal changes in denervated muscles after peripheral nerve injury. Neurosurgery. 1994; 35(6): 1077-1085. DOI: 10.1227/00006123-199412000-00010.

Creative Commons License

Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.