Біологічні властивості сплавів магнію та легуючих елементів придатних для створення біодеградуючих імплантів для остеосинтезу. (Огляд літератури)
ARTICLE PDF

Ключові слова

біодеградуючі сплави
біодеградуючі фіксатори
імплант для ортопедії і травматології
магній
магнієві сплави
огляд літератури

Як цитувати

Мовчан, О., Котелюх, Б., Лобода, П., Соловйова, Т., Тесля, С., & Втерковський, М. (2025). Біологічні властивості сплавів магнію та легуючих елементів придатних для створення біодеградуючих імплантів для остеосинтезу. (Огляд літератури). TERRA ORTHOPAEDICA, (1(124), 44-51. https://doi.org/10.37647/2786-7595-2025-124-1-44-51

Анотація

Актуальність. В останні роки в таких країнах як Японія, Китай, США та інші ведеться пошук біорезорбтивних матеріалів для остеосинтезу, які не потребують видалення. За попередніми даними, біодеградуючі фіксатори для остеосинтезу мають остеоіндуктивні та остеопроліферативні властивоті, позитивно впливають на зрощення в місці перелому. В теперішній час для остеосинтезу використовують конструкції, які виготовлені зі сталі та сплавів титану. Головним недоліком таких фіксаторів є необхідність повторної операції з видалення фіксаторів, що збільшує терміни непрацездатності пацієнта.

Мета. Провести аналіз та узагальнення наукових досліджень щодо впливу іонів металів на процеси регенерації кісткової тканини, судин та навколишніх тканин при застосуванні біодеградуючих матеріалів для остеосинтезу переломів на сучасному етапі.

Матеріали та методи. На основі даних наукометричних баз Scopus та Web of scince використовувався метод системного підходу − бібліосемантичний та аналітичний методи.

Результати та обговорення. У сучасній тканинній інженерії спостерігається поступовий перехід від використання біоінертних матеріалів до розробки та впровадження біодеградуючих матеріалів, здатних активно стимулювати процеси регенерації тканин. Встановлено, що іони металів відіграють ключову роль у біологічних процесах людського організму. Зокрема, іони цинку (Zn), бору (B) та цирконію (Zr) мають значний потенціал у стимуляції розвитку та регенерації кісткової тканини. Вони сприяють біохімічним реакціям, що беруть участь у метаболізмі кісткової тканини, покращують регенеративні процеси та позитивно впливають на активність остеобластів, остеокластів, клітин імунної системи, ендотеліальних клітин і фібробластів. Продукти деградації імплантатів на основі магнію (Mg) відіграють важливу роль у формуванні кісткового мікросередовища, беручи участь у складних взаємодіях між остеобластами, остеокластами, ендотеліальними та імунними клітинами. Це сприяє ефективній регенерації кісткової тканини.

https://doi.org/10.37647/2786-7595-2025-124-1-44-51
ARTICLE PDF

Посилання

Zhou C, Wang C, Xu K, Niu Z, Zou S, Zhang D, et al. Hydrogel platform with tunable stiffness based on magnetic nanoparticles cross-linked GelMA for cartilage regeneration and its intrinsic biomechanism. Bioact Mater. 2022; 30(5):615-628. doi: 10.1016/j.bioactmat.2022.07.013

Богуслаєв ВО, Бєліков СБ, Колесник ЮМ, Цивірко ЕІ, Чорний ВМ, Головаха МЛ, Яцун ЄВ. Сплави на основі магнію для імплантатів при остеосинтезі. Запоріжжя: АТ «МоторСіч». (2020)

Bohuslaiev VO, Bielikov SB, Kolesnyk YuM, Tsyvirko EI, Chornyi VM, Holovakha ML, Yatsun YeV. Splavy na osnovi mahniiu dlia implantativ pry osteosyntezi. Zaporizhzhia: AT «MotorSich». (2020). [in Ukrainian]

Shan Z, Xie X, Wu X, Zhuang S, Zhang C. Development of degradable magnesium-based metal implants and their function in promoting bone metabolism (A review). J Orthop Translat. 2022;(8)36:184-193. doi:10.1016/j.jot.2022.09.013

Wang X., Tang M. Bioceramic materials with ion‐mediated multifunctionality for wound healing. Smart Medicine. 2022;1(1):20220032.https://doi.org/10.1002/SMMD.20220032

Чорний ВМ, Головаха МЛ, Яцун ЄВ. Клінічний приклад використання біорезорбційного малеолярного гвинта для остеосинтезу внутрішньої кісточки. Запорожский медицинский журнал. 2020;1122(5):727–731. https://doi.org/10.14739/2310-1210.2020.5ххххх .

Chornyi VM, Holovakha ML, Yatsun YeV. Clinical example of using a bioresorbable malleolar screw for osteosynthesis of the medial malleolus. Zaporozhye Medical Journal. 2020;1122(5):727–731. [in Ukrainian]

Hang Y, Xu J, Ruan YC, Yu MK, O'Laughlin M, Wise H, et al. Implant-derived magnesium induces local neuronal production of CGRP to improve bone-fracture healing in rats. Nat Med. 2016;22(10):1160-1169. doi: 10.1038/nm.4162

Amukarimi S, Mozafari M. Biodegradable magnesium-based biomaterials: An overview of challenges and opportunities. MedComm. 2021;8(3):123-144. doi: 10.1002/mco2.59

Lu Y, Deshmukh S, Jones I, Chiu YL. Biodegradable magnesium alloys for orthopaedic applications. Biomater Transl. 2021;28(3):214-235. doi: 10.12336/biomatertransl.2021.03.005

Zhu WY, Guo J, Yang WF, Tao ZY, Lan X, Wang L, Xu J, Qin L, Su YX. Biodegradable

magnesium implant enhances angiogenesis and alleviates medication-related osteonecrosis of the

jaw in rats. J Orthop Translat. 2022;33:153-161. doi:10.1016/j.jot.2022.03.004.

Kamrani S, Fleck C. Biodegradable magnesium alloys as temporary orthopaedic implants: a review. Biometals. 2019;32(2):185-193. doi: 10.1007/s10534-019-00170-y

Gonzalez J, Hou RQ, Nidadavolu EPS, Willumeit-Römer R, Feyerabend F. Magnesium degradation under physiological conditions - Best practice. Bioact Mater. 2018;14(2):174-185. doi: 10.1016/j.bioactmat.2018.01.003

Grünewald TA, Rennhofer H, Hesse B, Burghammer M, Stanzl-Tschegg SE, Cotte M, et al. Magnesium from bioresorbable implants: Distribution and impact on the nano- and mineral structure of bone. Biomaterials. 2016;76:250-60. doi: 10.1016/j.biomaterials.2015.10.054

Razzaque MS. Magnesium: Are We Consuming Enough? Nutrients. 2018;10(12):1863. doi: 10.3390/nu10121863

Guo JD, Li L, Shi YM, Wang HD, Hou SX. Hydrogen water consumption prevents osteopenia in ovariectomized rats. Br J Pharmacol. 2013;168(6):1412-20. doi: 10.1111/bph.12036.

Belluci MM, de Molon RS, Rossa CJr, Tetradis S, Giro G, Cerri PS, et al. Severe magnesium deficiency compromises systemic bone mineral density and aggravates inflammatory bone resorption. J Nutr Biochem. 2020;77:108301. doi: 10.1016/j.jnutbio.2019.108301

Zhai Z, Qu X, Li H, Yang K, Wan P, Tan L, et al. The effect of metallic magnesium degradation products on osteoclast-induced osteolysis and attenuation of NF-κB and NFATc1 signaling. Biomaterials. 2014;35(4):299-310. doi: 10.1016/j.biomaterials.2014.04.044

Xie H, Cui Z, Wang L, Xia Z, Hu Y, Xian L, et al. PDGF-BB secreted by preosteoclasts induces angiogenesis during coupling with osteogenesis. Nat Med. 2014;20(11):127-128. doi: 10.1038/nm.3668

Yoshizawa S, Brown A, Barchowsky A, Sfeir C. Magnesium ion stimulation of bone marrow stromal cells enhances osteogenic activity, simulating the effect of magnesium alloy degradation. Acta Biomater. 2014;10(6):283-342. doi: 10.1016/j.actbio.2014.02.002

Chen ZT, Klein T, Murray RZ, Crawford R, Chang J, Wu CT, et al. Osteoimmunomodulation for the development of advanced bone biomaterials. Mater Today. 2016;19(6):304-321. doi: 10.1016/j.mattod.2015.11.004.

Wang M, Yu Y, Dai K, Ma Z, Liu Y, Wang J, et al. Improved osteogenesis and angiogenesis of magnesium-doped calcium phosphate cement via macrophage immunomodulation. Biomater Sci. 2016;4(11):1574-1583. doi: 10.1039/c6bm00290k

Moon S, Hong J, Go S, Kim BS. Immunomodulation for Tissue Repair and Regeneration. Tissue Eng Regen Med. 2023;20(3):389-409. doi: 10.1007/s13770-023-00525-0.

Li B, Cao H, Zhao Y, Cheng M, Qin H, Cheng T, et al. In vitro and in vivo responses of macrophages to magnesium-doped titanium. Sci Rep. 2021;11(1):59-89. doi: 10.1038/s41598-021-88664-z

Ibako P, Nowacki W, Castiglioni S, Mazur A, Maier JA. Extracellular magnesium and calcium blockers modulate macrophage activity. Magnes Res. 2016;29(1):11-21. doi: 10.1684/mrh.2016.0398

Plum LM, Rink L, Haase H. The essential toxin: impact of zinc on human health. Int J Environ Res Public Health. 2010;7(4):42-65. doi: 10.3390/ijerph7041342

Yuan T, Wang H, Wang Y, Dong S, Ge J, Li Z, et al. Inhibition of insulin degrading enzyme suppresses osteoclast hyperactivity via enhancing Nrf2-dependent antioxidant response in glucocorticoid-induced osteonecrosis of the femoral head. Mol Med. 2024;30:111. https://doi.org/10.1186/s10020-024-00880-1

Fung EB, Kwiatkowski JL, Huang JN, Gildengorin G, King JC, Vichinsky EP. Zinc supplementation improves bone density in patients with thalassemia: a double-blind, randomized, placebo-controlled trial. Am J Clin Nutr. 2013;98(4):960-71. doi: 10.3945/ajcn.112.049221.

Li C, Guo C, Fitzpatrick V, Ibrahim A, Zwierstra MJ, Hanna P, et al. Design of biodegradable, implantable devices towards clinical translation. Nat Rev Mater. 2020;5(1):61-81. doi: 10.1038/s41578-019-0150-z.

Bao G, Wang K, Yang L, He J, He B, Xu X, et al. Feasibility evaluation of a Zn-Cu alloy for intrauterine devices: In vitro and in vivo studies. Acta Biomater. 2022;142:374-387. doi: 10.1016/j.actbio.2022.01.053.

Wen X, Wang J, Pei X, Zhang X. Zinc-based biomaterials for bone repair and regeneration: mechanism and applications. J Mater Chem B. 2023;11(48):11405-11425. doi: 10.1039/d3tb01874a

Bosch-Rué È, Díez-Tercero L, Buitrago JO, Castro E, Pérez RA. Angiogenic and immunomodulation role of ions for initial stages of bone tissue regeneration. Acta Biomater. 2023;166:14-41. doi: 10.1016/j.actbio.2023.06.001

Su Y, Cappock M, Dobres S, Kucine AJ, Waltzer WC, Zhu D. Supplemental mineral ions for bone regeneration and osteoporosis treatment. Eng Regen. 2023;4(2):170-182. doi: 10.1016/j.engreg.2023.02.003.

Gao C, Peng S, Feng P, Shuai C. Bone biomaterials and interactions with stem cells. Bone Res. 2017;5:17059. doi: 10.1038/boneres.2017.59

Gao X, Xue Y, Zhu Z, Chen J, Liu Y, Cheng X, et al. Nanoscale Zeolitic Imidazolate Framework-8 Activator of Canonical MAPK Signaling for Bone Repair. ACS Appl Mater Interfaces. 2020;13(1):97-111. doi: 10.1021/acsami.0c15945

Park KH, Choi Y, Yoon DS, Lee KM, Kim D, Lee JW. Zinc Promotes Osteoblast Differentiation in Human Mesenchymal Stem Cells Via Activation of the cAMP-PKA-CREB Signaling Pathway. Stem Cells Dev. 2018;27(16):1125-1135. doi: 10.1089/scd.2018.0023

Wang S, Li R, Xia D, Zhao X, Zhu Y, Gu R, et al. The impact of Zn-doped synthetic polymer materials on bone regeneration: a systematic review. Stem Cell Res Ther. 2021;12(1):123. doi: 10.1186/s13287-021-02195-y

Jamel MM, Jamel MM, Lopez HF. Designing Advanced Biomedical Biodegradable Mg Alloys: A Review. Metals. 2022;12(1):85. https://doi.org/10.3390/met12010085

Sreenivasamurthy SA, Akhter FF, Akhter A, Su Y, Zhu D. Cellular mechanisms of biodegradable zinc and magnesium materials on promoting angiogenesis. Biomater Adv. 2022;139:213023. doi: 10.1016/j.bioadv.2022.213023

Su N, Villicana C, Yang F. Immunomodulatory strategies for bone regeneration: A review from the perspective of disease types. Biomaterials. 2022;28(6):121604. doi: 10.1016/j.biomaterials.2022.121604

Meng G, Wu X, Yao R, He J, Yao W, Wu F. Effect of zinc substitution in hydroxyapatite coating on osteoblast and osteoclast differentiation under osteoblast/osteoclast co-culture. Regen Biomater. 2019;6(6):349-359. doi: 10.1093/rb/rbz001

Zhu L, Hua F, Ding W, Ding K, Zhang Y, Xu C. The correlation between the Th17/Treg cell balance and bone health. Immun Ageing. 2020;(17)30. doi: 10.1186/s12979-020-00202-z

Martin KE, García AJ. Macrophage phenotypes in tissue repair and the foreign body response: Implications for biomaterial-based regenerative medicine strategies. Acta Biomater. 2021;(10)133:4-16. doi: 10.1016/j.actbio.2021.03.038.

Adusei KM, Ngo TB, Sadtler K. T lymphocytes as critical mediators in tissue regeneration, fibrosis, and the foreign body response. Acta Biomater. 2021;(10)133:17-33. doi: 10.1016/j.actbio.2021.04.023

Chen B, You Y, Ma A, Song Y, Jiao J, Song L, et al. Zn-Incorporated TiO2 Nanotube Surface Improves Osteogenesis Ability Through Influencing Immunomodulatory Function of Macrophages. Int J Nanomedicine. 2020;15(5):2095-2118. doi: 10.2147/IJN.S244349

Liu J, Zhao Y, Zhang Y, Yao X, Hang R. Exosomes derived from macrophages upon Zn ion stimulation promote osteoblast and endothelial cell functions. J Mater Chem B. 2021;9(18):3800-3807. doi: 10.1039/d1tb00112d

Nielsen FH, Stoecker BJ. Boron and fish oil have different beneficial effects on strength and trabecular microarchitecture of bone. J Trace Elem Med Biol. 2009;23(3):195-203. doi: 10.1016/j.jtemb.2009.03.003.

Dzondo-Gadet M, Mayap-Nzietchueng R, Hess K, Nabet P, Belleville F, Dousset B. Action of boron at the molecular level: effects on transcription and translation in an acellular system. Biol Trace Elem Res. 2002;85(1):23-33. doi:10.1385/BTER:85:1:23.

Baghdadi I, Zaazou A, Tarboush BA, Zakhour M, Özcan M, Salameh Z. Physiochemical properties of a bioceramic-based root canal sealer reinforced with multi-walled carbon nanotubes, titanium carbide and boron nitride biomaterials. J Mech Behav Biomed Mater. 2020;110:103892. doi:10.1016/j.jmbbm.2020.103892

Gizer M, Köse S, Karaosmanoglu B, Taskiran EZ, Berkkan A, Timuçin M, et al. The Effect of Boron-Containing Nano-Hydroxyapatite on Bone Cells. Biol Trace Elem Res. 2020;193(2):364-376. doi: 10.1007/s12011-019-01710-w.

Boyacioglu O, Orenay-Boyacioglu S, Yildirim H, Korkmaz M. Boron intake, osteocalcin polymorphism and serum level in postmenopausal osteoporosis. J Trace Elem Med Biol. 2018;48:52-56. doi:10.1016/j.jtemb.2018.03.005

Rondanelli M, Faliva MA, Peroni G, Infantino V, Gasparri C, Iannello G, et al. Pivotal role of boron supplementation on bone health: A narrative review. J Trace Elem Med Biol. 2020;62:126577. doi: 10.1016/j.jtemb.2020.126577.

Schünemann FH, Galárraga-Vinueza ME, Magini R, Fredel M, Silva F, Souza JCM, et al. Zirconia surface modifications for implant dentistry. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 2019;98:1294-1305. doi: 10.1016/j.msec.2019.01.062

Cunha W, Carvalho O, Henriques B, Silva FS, Özcan M, Souza JCM. Surface modification of zirconia dental implants by laser texturing. Lasers Med Sci. 2022;37(1):77-93. doi: 10.1007/s10103-021-03475-y

Han K, Sathiyaseelan A, Lu Y, Kim KM, Wang MH. Agar/carboxymethyl cellulose composite film loaded with hydroxyapatite nanoparticles for bone regeneration. Cellulose. 2024;31:9319–9334. doi:10.1007/s10570-024-06148-5

Yousuke T. Crushing of grain of cast details from magnesian alloys. Chiba kogyo kenkyu = Rept Chiba Inst Technol. 1999;46:349-350.

Huan ZG, Leeflang MA, Zhou J, Fratila-Apachitei LE, Duszczyk J. In vitro degradation

behavior and cytocompatibility of Mg-Zn-Zr alloys. J Mater Sci Mater Med. 2010 Sep;21(9):2623-

doi:10.1007/s10856-010-4111-8.

Gouveia PF, Mesquita-Guimarães J, Galárraga-Vinueza ME, Souza JCM, Silva FS, Fredel MC, et al. In-vitro mechanical and biological evaluation of novel zirconia reinforced bioglass scaffolds for bone repair. J Mech Behav Biomed Mater. 2021;114:104164. doi:10.1016/j.jmbbm.2020.104164

Souza JC, Silva JB, Aladim A, Carvalho O, Nascimento RM, Silva FS, et al. Effect of Zirconia and Alumina Fillers on the Microstructure and Mechanical Strength of Dental Glass Ionomer Cements. Open Dent J. 2016;10:58-68. doi: 10.2174/1874210601610010058

Mesquita-Guimarães J, Detsch R, Souza AC, Henriques B, Silva FS, Boccaccini AR, et al. Cell adhesion evaluation of laser-sintered HAp and 45S5 bioactive glass coatings on micro-textured zirconia surfaces using MC3T3-E1 osteoblast-like cells. Mater Sci Eng C. 2020;109:110492. doi:10.1016/j.msec.2019.110492

Mandelli F, Traini T, Ghensi P. Customized-3D zirconia barriers for guided bone regeneration (GBR): clinical and histological findings from a proof-of-concept case series. J Dent. 2021;114:103780. doi: 10.1016/j.jdent.2021.103780.

Whited BM, Skrtic D, Love BJ, Goldstein AS. Osteoblast response to zirconia-hybridized pyrophosphate-stabilized amorphous calcium phosphate. J Biomed Mater Res A. 2006;76(3):596-604. doi: 10.1002/jbm.a.30573

An SH, Matsumoto T, Miyajima H, Nakahira A, Kim KH, Imazato S. Porous zirconia/hydroxyapatite scaffolds for bone reconstruction. Dent Mater. 2012;12;28:1221-31. doi: 10.1016/j.dental.2012.09.001.

Cunha W, Carvalho O, Henriques B, Silva FS, Özcan M, Souza JCM. Surface modification of zirconia dental implants by laser texturing. Lasers Med Sci. 2022;37(1):77-93. doi: 10.1007/s10103-021-03475-y

Creative Commons License

Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.